Введение Согласно Стратегии повышения качества пищевой продукции в Российской Федерации до 2030 г. приоритетным направлением является разработка современных технологий производства пищевых ингредиентов и технологии переработки пищевой продукции, включая биотехнологии для создания условий производства пищевой продукции нового поколения с заданными характеристиками качества, и продвижения принципов здорового питания.В соответствии с этим исследования в области создания технологий и проектирования рецептурных составов функциональных, обогащенных, специализированных пищевых продуктов, в частности на рыбной основе, с использованием методов биотехнологической обработки, например биотрансформация сырья бактериальными заквасочными культурами (БЗК), являются актуальными и развивающимися [1].В пищевой биотехнологии на данном периоде развития особое внимание уделяется использованию перспективных штаммов БЗК для получения пищевой продукции с улучшенными качественными характеристиками и функциональной направленностью. Бактериальные заквасочные культуры как защитные микроорганизмы проявляют антиоксидантные, бактерицидные и антагонистические свойства, и за счет образования метаболитов (кислоты, бактериоцины) возможно возникновение эффекта биоконсервирования, что будет способствовать продлению сроков годности пищевой продукции, в частности рыбной. Применение БЗК в технологии производства пищевой рыбной продукции также позволит улучшить ее органолептические свойства (коррекция консистенции и минимизация рыбного вкуса и запаха за счет мягкой деструкции белковых компонентов и снижения уровня образования азотистых летучих оснований в мышечной ткани рыб) и повысить питательную ценность (за счет накопления белковых и эссенциальных веществ) [2, 3]. При этом биохимические процессы, протекающие в рыбном сырье под действием БЗК и приводящие к накоплению белковых и эссенциальных веществ, а также наличие пробиотикови постбиотиков способствуют получению обогащенного пищевого продукта, соответствующего принципам здорового образа жизни, с пробиотической направленностью для поддержания функциональной активности органов и тканей человека, корректирования состава внутренней индигенной микрофлоры кишечной микробиоты и, как следствие, повышения иммунной защиты организма [4].В связи с этим основной целью научных исследований являлась верификация оптимальных условий и технологических параметров биотрансформации рыбного сырья с применением БЗК.  Объекты и методы исследованийВ качестве основных объектов для изучения возможности биотрансформации рыбного сырья БЗК были выбраны:– филе промысловых видов рыб – минтай (Theragra chalcogramma), треска (Gadus macrocephalus), макрурус малоглазый (Albatrossia pectoralis); – филе потенциально промысловых видов рыб – получешуйника Гилберта (Hemilepidotus gilberti);– ранее подобранные штаммы БЗК [5]: Lactobacillus casei LC 4P1, Lactobacillus acidophilus А630, Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus (Пб), Streptococcus thermophilus ST 440, Propionibacterium freudenreichii KM-186, Bifidobacterium bifidum 83; – модельные растворы среды для биотрансформации: 3,5 %-й раствор глюкозы, восстановленная молочная сыворотка. Органолептическую оценку рыбного сырья после биотрансформации БЗК (цвет, запах, консистенция) проводили по разработанной 5-балльной шкале [6]. Массовую долю воды, белка, жира углеводов и золы определяли по ГОСТ 7636-85, ГОСТ 34134-2017 [7, 8]. Активную кислотность (рН) определяли с помощью рН-метра Testo 106. Активность воды (Aw) определяли на приборе Aqualab 4TEV. Титруемую кислотность определяли по ГОСТ 3624-92 [9]. Влагосвязывающую способность (ВСС) определяли весовым методом [8]. Исследование микроструктуры образцов мышечной ткани филе рыб проводили с использованием бинокулярного микроскопа марки «Микмед-5» с оптическим увеличением × 40. Общую микробную обсемененность (КМАФАнМ) и общее количество молочнокислых бактерий в образцах мышечной ткани филе рыб до и после биотрансформации БЗК определяли с использованием петрифильмов 3M Petrifilm (AC) в соответствии с методическими указаниями производителя [10]. Результаты и их обсуждениеНа основании ранее проведенного математического моделирования [11] рассчитаны и подобраны оптимальные условия и параметры биотрансформации рыбного сырья с применением БЗК: средами для биотрансформации были выбраны 3,5 %-й раствор глюкозы и восстановленная молочная сыворотка; количество вносимых БЗК – не менее 4,5 · 10 lg КОЕ/г для раствора глюкозы и 5 · 10 lg КОЕ/г для восстановленной молочной сыворотки; рН среды для биотрансформации – не более 5,3–5,9 в начале процесса и не менее 4,3–4,6 в конце процесса; соотношение «сырье : раствор» было принято 1 : 2; продолжительность процесса биотрансформации – не менее 5 ч при температуре 37 °С.На данном этапе исследований экспериментально подтверждались подобранные с помощью математического моделирования условия, режимы, эффект биоконсервирования, а также производился выбор определенных БЗК и сред для биотрансформации рыбного сырья посредством изучения влияния штаммов микроорганизмов и их метаболитов на свойства и показатели качества мышечной ткани филе изучаемых видов рыб. Контрольным образцом являлась мышечная ткань филе рыб, не подвергнутая воздействию БЗК.В результате проведенного процесса биотрансформации показатели химического состава обработанных образцов мышечной ткани филе рыб под действием метаболитов БЗК претерпевали некоторые изменения по сравнению с контролем (табл. 1).  Таблица 1Table 1Средние значения химического состава до и после биотрансформации образцов мышечной ткани филе рыбв модельных растворах (раствор глюкозы и восстановленная молочная сыворотка)*Average values of chemical composition before and after biotransformation of fish fillet muscle tissue samplesin model solutions (glucose solution and reduced whey)Образцы мышечной тканифиле рыбПоказатель, %белкижирыуглеводызолавлага123123123123123Минтай17,4018,7018,010,110,040,040,390,060,091,000,790,2981,1080,9980,87Треска17,9018,7819,230,140,0510,0500,590,0490,050,870,100,5081,2180,9079,99Макрурус7,808,869,060,110,080,080,120,090,081,100,700,0890,8989,2089,15Бычок18,3919,2518,990,520,450,450,520,490,361,020,780,3679,5478,8278,99 * 1 – контроль; 2 – глюкоза; 3 – восстановленная молочная сыворотка.  Влияния вида БЗК на резкое изменение химического состава не обнаружено, в связи с этим указана средняя динамика в зависимости от вида мышечной ткани филе рыб и модельного раствора для биотрансформации. Повышение содержания белка в среднем на 1 % (см. табл. 1) в образцах мышечной ткани рыб связано с накоплением бактериальной массы микроорганизмов в процессе своего развития. Особенно активное накопление биомассы наблюдалось с использованием штаммов БЗК L. acidophilus А630, L. casei LC 4P1, B. bifidum 83. При этом динамика роста содержания белка положительная как в 3,5 %-м растворе глюкозы, так и в восстановленной молочной сыворотке. Снижение количества жиров, углеводов и минеральных веществ связано с ростом БЗК в растворах, которые используют данные вещества (помимо внесенных углеводов) для своего питания и дальнейшего развития, а также с переходом растворяемых форм веществ в модельные растворы при биотрансформации [12].Данные по органолептической оценке в виде профилограмм запаха, консистенции и цвета образцов мышечной ткани филе рыб после процесса биотрансформации БЗК представлены на рис. 1.  а бРис. 1. Профилограммы запаха, консистенции и цвета образцов мышечной ткани филе рыб до и после процессабиотрансформации БЗК в модельных растворах: а – раствор глюкозы 3,5 %; б – восстановленная молочная сыворотка Fig. 1. Profilograms of smell, consistency and color of fish fillet muscle tissue samples before and after the processbiotransformation of BPC in model solutions: a – glucose solution of 3.5%; б – reduced whey  Отмечалось, что обработка растворами с БЗК, кроме растворов с L. bulgaricus (Пб), P. freudenreichii KM-186, B. bifidum 83, положительно влияет на органолептические показатели филе выбранных видов рыб. В модельном растворе глюкозы (3,5 %) для мышечной ткани филе минтая и трески наиболее оптимальными БЗК оказались L. acidophilus А630, для макруруса и бычка – St. thermophilus ST 440, в восстановленной молочной сыворотке БЗК для мышечной ткани филе минтая – L. casei LC 4P1, трески, макруруса и бычка – L. acidophilus А630. Запах образцов исследования после биотрансформации был оценен как приятный с легкой кислинкой. Рыбный запах после воздействия L. acidophilus А630 и St. thermophilus ST 440, по сравнению с контролем, практически отсутствовал, и был оценен в 4–5 баллов. Исследованные образцы имели кремовый или серый цвет и консистенцию, распадающуюся на волокна по сравнению с более плотной консистенцией контрольных образцов мышечной ткани филе рыб (1–2 балла). В образцах мышечной ткани филе макруруса консистенция была мажущаяся (5 баллов).Ароматические характеристики образцов с культурами БЗК L. bulgariсus (Пб), P. freudenreichii KM-186 и B. bifidum 83 характеризуются как специфичные и негармоничные (1–3 балла). В частности, при обработке пропионовыми (P. freudenreichii KM-186) и бифидобактериями (B. bifidum 83), присутствовали неприятные, несвойственные запахи, что связано со способностью данных микроорганизмов продуцировать уксусную и пропионовые кислоты, которые и обуславливают специфическое органолептическое восприятие [13].Были проведены микроструктурные исследования мышечной ткани филе выбранных видов рыб до и после процесса биотрансформации БЗК (рис. 2).    а  б  в  г  д  е  ж з Рис. 2. Микроструктура мышечной ткани филе рыб до и после биотрансформации БЗК:а – минтай до обработки; б – минтай после обработки; в – треска до обработки; г – треска после обработки;д – макрурус до обработки; е – макрурус после обработки; ж – бычок до обработки; з – бычок после обработки.Ув. × 40 Fig. 2. Microstructure of muscle tissue of fish fillets before and after biotransformation of BZK:a – pollock before processing; б – pollock after processing; в – cod before processing; г – cod after processing;д – macrurus before processing; е – macrurus after processing; ж – goby before processing; з – goby after processing.Enlargement × 40  Следует отметить, что микроструктура мышечной ткани не зависела от вида используемого БЗК и среды при обработке и изменения были аналогичны друг другу, в связи с этим показана общая закономерность микроструктурных изменений. Проанализировав микроструктуру мышечной ткани филе рыб до и после биотрансформации, можно сделать вывод, что после процесса волокна миофибрилл отделялись друг от друга и распадались на «нити», что, вероятнее всего, связано с воздействием кислот на белковую структуру самих волокон с последующей их деструкцией, приводящей к снижению прочности. Таким образом, обработанное рыбное сырье может являться оптимальной пищевой матрицей для создания гомогенизированных и тонкоизмельченных продуктов, что позволит модернизировать параметры измельчения за счет более мягкой структуры мышечной ткани [14].В мышечной ткани филе рыб наблюдается незначительное снижение pH после 5 ч выдержки в используемых для процесса биотрансформации модельных растворах с БЗК, при этом под действием L. acidophilus А630 и St. thermophilus ST 440, по сравнению с другими БЗК (L. casei LC 4P1, L. bulgaricus (Пб), P. freudenreichii KM-186, B. bifidum 83), протекало более активное подкисление: в среде с глюкозой – для мышечной ткани филе минтая до 6,51, трески – 6,01, макруруса – 6,84, бычка – 5,98; в среде восстановленной молочной сыворотки для мышечной ткани филе минтая до 6,30, трески – 5,98, макруруса – 6,70, бычка – 5,70.В сыворотке снижение рН в кислую сторону интенсивней по сравнению с раствором глюкозы. С целью ингибирования микроорганизмов кислые значения рН предпочтительнее, чем щелочные, но при этом сильного подкисления в образцах мышечной ткани рыб после процесса биотрансформации не наблюдается [15]. В модельных растворах (3,5 %-й раствор глюкозы и восстановленная молочная сыворотка) для биотрансформации вне зависимости друг от друга наблюдается снижение рН в среднем до 4,4 единицы, что связано с процессом метаболизма и последующим образованием органических кислот, влияющих на кислотности растворов [13]. Как показали исследования, характер изменения активной кислотности идентичен для всех образцов мышечной ткани филе рыб и растворов, поэтому выбранные растворы могут являться взаимозаменяемыми. Также рН сред для биотрансформации в конце процесса коррелировал с данными, полученными при математическом моделировании, статистическая ошибка минимальна. В процессе биотрансформации происходит уменьшение ВСС в образцах мышечной ткани филе рыб (в среднем – в растворе глюкозы: минтай на 15,32 %, треска – 11,34 %; макрурус – 17,58 %; бычок – 12,79 %; в восстановленной молочной сыворотке: минтай на 15,47 %; треска – 12,35 %; макрурус – 16,89 %; бычок – 13,29 %). Данную закономерность можно объяснить смещением рН в кислую сторону, а также деструктивными изменениями мышечной ткани, вследствие чего для дальнейшего применения обработанного филе в технологиях производства формованных и структурированных продуктов необходимо использовать специальные технологические приемы и структурообразующие агенты [3].После процесса биотрансформации было определено количество остаточных живых клеток БЗК в обработанных образцах мышечной ткани филе рыб для подтверждения их наличия (табл. 2). Таблица 2 Table 2Количество БЗК в образцах мышечной ткани филе рыб после биотрансформации, КОЕ/гThe amount of BSC in muscle tissue samples of fish fillets after biotransformation, CFU/gОбразцымышечной ткани филе рыбL. casei LC 4P1L. acidophilus А630L. bulgaricus (Пб)St. thermophilus ST 440P. freudenreichii KM-186B. bifidum 83Раствор глюкозы 3,5 %Минтай2 · 10102 · 10101 · 10102 · 10103 · 10102 · 1010Треска2 · 10102 · 10103 · 1010Макрурус3 · 10103 · 10102 · 1010Бычок2 · 10102 · 10103 · 1010Восстановленная молочная сывороткаМинтай2 · 10103 · 10102 · 10102 · 10102 · 10102 · 1010Треска2 · 10101 · 10103 · 1010Макрурус2 · 10101 · 10102 · 10103 · 1010Бычок3 · 10101 · 10102 · 10102 · 1010  Количество клеток БЗК в исследуемых образцах мышечной ткани филе рыб превышает 107–109 КОЕ/г [16–19], что обосновывает возможность применения в рецептурных составах пробиотических пищевых продуктов на рыбной основе.Для  определения  возможности  использования  полученного сырья для продуктов питания, подвергаемых термической обработке, были проведены исследования по способности БЗК, находящихся в мышечной ткани филе рыб, выдерживать определенные температурные режимы (табл. 3).  Таблица 3Table 3Выживаемость БЗК в мышечной ткани рыбы после биотрансформации под действием температуры, КОЕ/гSurvival of BSC in fish muscle tissue after biotransformation under the influence of temperature, CFU/gТемпература, °CПродолжительность температурноговоздействия, минL. casei LC 4P1L. acidophilus А630L. bulgaricus (Пб)St. thermophilus ST 440P. freudenreichii KM-186B. bifidum 8350 15 1 · 10 10304560601530451 · 10 9601 · 10 870151 · 10 5––1 · 10 4––301 · 10 41 · 10 3451 · 10 360  Не выявлено влияния вида мышечной ткани филе рыб на выживаемость БЗК, в соответствии с этим показана обобщенная, для всех образцов, тенденция к изменению изучаемого показателя.Согласно полученным данным по выживаемости БЗК под воздействием различных термических режимов обработки в течение 15, 30, 45 и 60 мин было определено, что L. casei LC 4P1 и St. thermophilus ST 440 способны оставаться жизнеспособными в количестве 30 % при температуре 70 °С в течение 60 мин. Все остальные культуры БЗК выживают при температуре 60 °С в количестве 80 % от изначального значения. Таким образом, оптимальным режимом термической обработки полученного биотрансформированного рыбного сырья является воздействие температуры от 60 до 70 °С в течение 60 мин, что необходимо учитывать при разработке пищевого продукта на его основе и подразумевает использование щадящих режимов термического воздействия, например технология «Су-Вид» [20]. Следует отметить, что количество L. casei LC 4P1 и St. thermophilus ST 440 при температуре 70 °С в течение продолжительности обработки 15, 30, 45, 60 мин составляет меньше 106–109 КОЕ/г, а остальные культуры БЗК погибают, что не соответствует требованиям, предъявляемым к пробиотическим продуктам питания [16, 17], в связи с этим необходимо включать в рецептурный состав продукта простые углеводы и пищевые протекторы, чтобы защитить БЗК и активировать их рост [21], а также созревание (выдержку), продолжительность которого зависит от стационарной фазы роста [13]. В случае гибели клеток бактерий пробиотический эффект будут оказывать постбиотики, определение которым дала Международная научная ассоциация пробиотиков и пребиотиков (ISAPP) в 2021 г. и определила постбиотик как «препарат из неживых микроорганизмов и/или их компонентов, который приносит пользу для здоровья хозяина» [22].Также в качестве защитного механизма возможно использовать сублимацию, которая активно используется для получения сухих форм БЗК и позволяет сохранить их жизнеспособность за счет анабиоза и последующего их активирования оптимальными условиями, в частности температурой и воздействием внутренней среды желудочно-кишечного тракта человека [1, 3, 13].В последующих исследованиях определялась устойчивость клеток БЗК к выживанию в течение 7 суток при температуре 0–4 °С в образцах мышечной ткани филе рыб после биотрансформации для обоснования динамики их скорости отмирания (табл. 4). Таблица 4 Table 4Динамика изменения численности БЗК при хранении образцов мышечной ткани филе рыбпосле биотрансформации, КОЕ/гDynamics of changes in the number of BSCs during storage of fish fillet muscle tissue samplesafter biotransformation, CFU/gОбразцы мышечной ткани филе рыбL. casei LC 4P1L. acidophilus А630L. bulgaricus (Пб)St. thermophilus ST 440P. freudenreichii KM-186B. bifidum 830 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сутРаствор глюкозы 3,5%Минтай2 · 10102 · 1072 · 10102 · 1071 · 10102 · 1072 · 10101 · 1083 · 10103 · 1072 · 10103 · 107Треска 1 · 1082 · 10101 · 1083 · 1072 · 10101 · 1083 · 10102 · 107Макрурус3 · 10102 · 1073 · 10101 · 1083 · 1071 · 1083 · 1072 · 1010Бычок2 · 10103 · 1072 · 10102 · 1073 · 10103 · 1071 · 1081 · 108Восстановленная молочная сывороткаМинтай2 · 10102 · 1073 · 10102 · 1082 · 10101 · 1082 · 10102 · 1082  · 0103 · 1072  · 10102 · 107Треска 2 · 1082 · 10101 · 10103 · 1073 · 10104 · 1072 · 108Макрурус3 · 1072 · 10102 · 1081 · 10101 · 1082 · 0102 · 1083 · 10104 · 107Бычок3 · 10104 · 1071 · 10102 · 1081  · 1082 · 10103 · 1072 · 10102 · 107  Анализируя данные табл. 4, можно предположить, что количество клеток БЗК в среднем уменьшается на 102–103 КОЕ/г, что связано с началом их фазы отмирания и температурой хранения. Исходя из этого можно аппроксимировать количественное содержание бактерий на 14 и 28 сутки хранения, что будет равняться 104 и 101 КОЕ/г соответственно. Наиболее устойчивыми культурами БЗК в процессе хранения обработанных образцов являются L. acidophilus А630 и St. thermophilus ST 440. Полученные данные по выживаемости БЗК в процессе хранения мышечной ткани филе рыб также подтверждают необходимость дополнительного внесения углеводов и протекторных пищевых веществв рецептурный состав продуктов для поддержания их количества на уровне 106–107 КОЕ/г в течение всего срока годности [16, 17].При исследовании микробиологической безопасности было отмечено, что по прошествии 7 суток хранения при 0–4 °С в контрольных образцах необработанной мышечной ткани филе рыб наблюдалось превышение показателя КМАФАнМ [3, 12] по сравнению с обработанными образцами мышечной ткани (табл. 5). Таблица 5 Table 5Динамика изменения КМАФАнМ после биотрансформации и в процессе хранения, КОЕ/гDynamics of changes in CMAFAnM after biotransformation and during storage, CFU/gОбразцы мышечной ткани филе рыбКонтрольL. casei LC 4P1L. acidophilus А630L. bulgaricus(Пб)St. thermophilus ST 440P. freudenreichiiKM-186B. bifidum 830 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сут0 сут7 сутРаствор глюкозы 3,5 %Минтай2 · 1031 · 1061,2 · 1011,3 · 1021,2 · 1011,4 · 1021,3 · 1011,2 · 1021,4 · 1011 · 1021,3 · 1011,3 · 1021,1 · 1011,6 · 102Треска5 · 1027 · 1051,2 · 1015,1 · 1021,2 · 1012 · 1022 · 1012,1 · 1021,3 · 1012,3 · 1025 · 1014,3 · 1022,3 · 1012,1 · 102Макрурус3 · 1022 · 1061,3 · 1014,2 · 1021,5 · 1011 · 1021,4 · 1013 · 1024 · 1011,8 · 1023,1 · 1013,2 · 1024,2 · 1011,6 · 102Бычок2 · 1032 · 1061,1 · 1013 · 1022 · 1011 · 1021,1 · 1012,2 · 1026 · 1013,1 · 1024,2 · 1014,1 · 1025,1 · 1011,8 · 102Восстановленная молочная сывороткаМинтай2 · 1031 · 1061,2 · 1012 · 1023,3 · 1011,2 · 1022 · 1011 · 1022 · 1012 · 1022,7 · 1011,3 · 1022,1 · 1016,2 · 102Треска5 · 1027 · 1052,1 · 1012,2 · 1022 · 1011 · 1023,1 · 1012,3 · 1022 · 1013,2 · 1023,5 · 1012,4 · 1023,6 · 1012,9 · 102Макрурус3 · 1022 · 1063,2 · 1011,2 · 1021,2 · 1011 · 1024,1 · 1011,2 · 1021,2 · 1011,6 · 1024,1 · 1011,2 · 1023,4 · 1014,4 · 102Бычок2 · 1032 · 1061,8 · 1012,4 · 1021 · 1013,2 · 1022,6 · 1013,1 · 1022,3 · 1013 · 1022,7 · 1012,5 · 1022,2 · 1015,2 · 102                   В образцах мышечной ткани филе рыб после биотрансформации БЗК, во время модельного хранения, среднее значение КМАФАнМ составляло 2 · 102 КОЕ/г, что находится в пределах допустимого уровня (не более 1 · 105 КОЕ/г) [18, 23]. При этом следует отметить, что средний минимальный рост КМАФАнМ установлен при обработке филе рыб раствором глюкозы и восстановленной молочной сывороткой, содержащих L. acidophilus А630. Максимальный средний рост КМАФАнМ зафиксирован при обработке филе рыб молочной сывороткой, содержащей B. bifidum 83.Данные микробиологических исследований подтверждают эффект биоконсервирования в обработанных образцах рыбного филе. Культуры БЗК за счет своего развития и продуцирования активных метаболитов (молочной, уксусной и пропионовой кислот и бактериоцинов) оказывают угнетающее действие на общую обсемененность и, соответственно, на нежелательную микрофлору, развивающуюся в рыбном сырье в процессе модельного хранения. Заключение Для обработки рыбного сырья отобраны БЗК St. thermophilus ST 440 и L. acidophilus А630, которые оказывают положительное влияние на органолептические показатели обработанного рыбного филе, более активно замедляют рост КМАФАнМ, являются более устойчивыми культурами при хранении, в частности St. thermophilus ST 440 способен выдерживать более высокие температуры воздействия, чем другие культуры. Следует отметить, что P. freudenreichii KM-186, B. bifidum 83 и L. bulgaricus (Пб) также имеют положительные характеристики, но отрицательно влияют на ароматические характеристики мышечной ткани филе рыб. Верифицированы оптимальные условия и параметры биотрансформации мышечной ткани филе рыб: – доза внесения БЗК в количестве 4,5 · 1010 КОЕ/г с продолжительностью обработки в течение 5 ч, что подтверждают данные, полученные при математическом моделировании процесса биотрансформации;– рН среды для биотрансформации – не более 5,3–5,9 в начале процесса и не менее 4,3–4,6 в конце процесса;– продолжительность процесса биотрансформации – не менее 5 ч;– температура процесса биотрансформация – 37 °С;– соотношение «сырье : раствор» 1 : 2.Модельные среды могут быть взаимозаменяемыми, но предпочтение отдано раствору глюкозы концентрацией 3,5 %, т. к. при его использованииу большинства образцов ВСС имеет более высокие показатели, менее интенсивное подкисление, а выбранные БЗК в ее составе оказывают положительное влияние на органолептические показатели, в частности запах. Также необходимо отметить, что молочная сыворотка относится к отходам производства молочной продукции, вследствие этого после процесса биотрансформации отработанную среду на ее основе необходимо рационально утилизировать или восстанавливать, что подразумевает дополнительные финансовые затраты, т. к. она не рекомендована к сливу в канализационную систему [24].Данная выборка БЗК, среды, параметров и условий позволит в дальнейшем получить образцы рыбного филе с приятным запахом, приемлемой консистенцией, необходимым количеством БЗК в филе в качестве основы для разработки пробиотических пищевых рыбных продуктов. На следующем этапе исследований будут проводиться разработки рецептурного состава продукта и, в связи с особенностями БЗК, технологических параметров термической обработки, а также изучаться защитные протекторы для сохранения их жизнедеятельности как во время технологического процесса, так и в процессе хранения